КАДИМКИ МАЛИНА КУЛЬТУРАГА (IN VITRO) КИРГИЗҮҮДӨ МИКРОБГО КАРШЫ ПРЕПАРАТТАРДЫ (БЕНОМИЛ, ЦЕФОТАКСИМ) КОЛДОНУУНУН ТААСИРДҮҮЛҮГҮ

Кабыл алынган убакыт 02.08.2024
Түзөтүлгөн 31.10.2024
Жарыяланган 06.12.2024

Аннотация

Кадимки дан куурай (малина) in vitro культурага киргизүүдө мурда колдонулган дарылар менен бирге микробго каршы препараттар беномил жана цефотаксим колдонулган. Биз микроорганизмдерге каршы бул дарылардын ар кандай концентрациясынын таасирдүулүгүн изилдедик. Натрий гипохлоритинин 1% эритмесин 5-7 мүнөттө колдонуу дарыланган өсүмдүктөр үчүн эң зыянсыз экендиги эксперименталдык түрдө аныкталган. Жогорку концентрация өсүмдүктөрдүн жарым-жартылай же толук куурашына алып келди. Кадимки дан куурайды in vitro культурасына киргизүү үчүн эң жакшы убакыт - малина 30-40 см бийиктикке жеткенде, өсүмдүктөрдүн вегетация мезгилинде жана сабагында 10 бүчүрдүн пайда болушу. Эң эффективдүү варианттар экспланттарды 1% натрий гипохлоритинин эритмеси менен 5-7 мүнөткө стерилизациялоо, микробго каршы препараттар менен алдын ала дарылоо: беномил 500 мг, цефотаксим 0,125 мг 1 литрге 3 саат бою. Бул жашоого жөндөмдүү стерилдүү экспланттардын санын 20% га чейин көбөйтүүнү камсыз кылат.Башкача айтканда, экспланттарды натрий гипохлорити менен айкалыштырып стерилизациялоодо микробго каршы препараттарды (беномил, цефотаксим) колдонуу өсүмдүктөрдүн жашоо көрсөткүчүн 10%ке жогорулатаарын эксперименталдык түрдө аныктадык

Негизги сөздөр

стерилдөө беномил цефотаксим эксплант in vitro культурасы эпифиттик жана эндофиттик микроорганизмдер
Цитаталоо
Nurgaziev, R., Isakeev, M., Mambetov, K., Akhmedzhanov, M., Nurmanov, Ch., & Boronbaeva, A. (2024). EFFICACY OF ANTIMICROBIAL AGENTS (BENOMYL, CEFOTAXIME) WHEN INTRODUCED INTO CULTURES (IN VITRO) OF COMMON RASPBERRY. Bulletin of the Kyrgyz National Agrarian University, 22(5), 25-35.

Колдонулган булактар

[1] Kalashnikova, E.A., & Rodin, A.R. (2001). Obtaining planting material for woody, flowering, and herbaceous plants using methods of cell and genetic engineering. Moscow.

[2] Kolbanova, E.V., & Kukharchyk, N.V. (n.d.). Technology for creating healthy mother plantations of black currant in the Republic of Belarus. Samokhvalovichi, Belarus: RUE Institute for Fruit Growing.

[3] Altan, F., Bürün, B., & Ahin, N. (2010). Fungal contaminants observed during micropropagation of Lilium candidum L. and the effect of chemotherapeutic substances applied after sterilization. African Journal of Biotechnology, 9(7), 991-995.

[4] George, E.F. (1993). Plant propagation by tissue culture. Part 1: Technology. Edington: Exegetics Ltd.

[5] Gunson, H.E., & Spencer-Phillips, P.T.N. (1994). Latent bacterial infections: Epiphytes and endophytes as contaminants of micro propagated plants. In J.R. Nicholas (Ed.), Physiology, growth and development of plants in culture (pp. 379-396). Dordrecht: Kluwer Academic Publishers.

[6] Herman, E.B. (2004). Recent advances in plant tissue culture VIII: Microbial contaminants in plant tissue cultures: Solutions and opportunities 1996-2003. Shrub Oak, NY: Agritech Consultants Inc.

[7] Hirano, S.S., & Upper, C.D. (1990). Population biology and epidemiology of Pseudomonas syringae. Annual Review of Phytopathology, 28, 155-177.

[8] Leifert, C., & Waites, W.M. (1992). Bacterial growth in plant-tissue culture media. Journal of Applied Bacteriology, 72, 460-466.

[9] Mathias, R.J., & Boyd, L.A. (1986). Cefotaxime stimulates callus growth, embryogenesis and regeneration in hexaploid bread wheat (Triticum aestivum L. em. Thell). Plant Science, 46, 217-223.

[10] Medelyaeva, Z., Nozdracheva, G., Mikulina, Yu.S., & Golikova, S.A. (2022). Cultivation technology and efficiency of berry crops production in the conditions of the Central Chernozem Region. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 949, article number 012106.

[11] Asif, M., Eudes, F., Randhawa, H., Amundsen, E., Yanke, J., & Spaner, D. (2013). Cefotaxime prevents microbial contamination and improves microspore embryogenesis in wheat and triticale. Plant Cell Reports, 32(10), 1637-1646. doi: 10.1007/s00299-013-1476-4.

[12] Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15, 473-497.

[13] Pollock, K., Barfield, D.G., & Shields, R. (1983). The toxicity of antibiotics to plant cell cultures. Plant Cell Reports, 2, 36-39.

[14] Shen, H., Li, Z., Han, D., Yang, F., Huang, Q., & Ran, L. (2010). Detection of indigenous endophytic bacteria in Eucalyptus urophylla in vitro conditions. Frontiers of Agriculture in China, 4, 37-41.

[15] Shields, R., Robinson, S.J., & Anslow, P.A. (1984). Use of fungicides in plant tissue culture. Plant Cell Reports, 3, 33-36.

[16] Shehata, A.M., Wannarat, W., Skirvin, R.M., & Norton, M.A. (2010). The dual role of carbenicillin in shoot regeneration and somatic embryogenesis of horseradish (Armoracia rusticana) in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 102, 397-402.

[17] Thomas, P., Goplakrishnan, C., & Krishnareddy, M. (2011). Soft rot inciting Pectobacterium carotovorum (syn. Erwinia carotovora) is unlikely to be transmitted as a latent pathogen in micropropagated banana. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 105, 423-429.

[18] Vaz, F.B.D., Dossantos, A.V.P., Manders, G., Cocking, E.C., Davey, M.R., & Power, J.B. (1993). Plant regeneration from leaf mesophyll protoplasts of the tropical woody plant, passionfruit (Passiflora edulis fv Flavicarpa degener): The importance of the antibiotic cefotaxime in the culture medium. Plant Cell Reports, 12, 220-225.

[19] Waheeda, K., & Shyam, K.V. (2017). Formulation of novel surface sterilization method and culture media for the isolation of endophytic actinomycetes from medicinal plants and its antibacterial activity. Journal of Plant Pathology & Microbiology, 8(2).

[20] Yang, H.J. (1976). Effect of benomyl on Asparagus officinalis L. shoot and root development in culture media. HortScience, 11(5), 473-474.