Аннотация
При введении в культуру in vitro малины обыкновенной наряду с ранее применяемыми препаратами использовались антимикробные препараты беномил и цефотаксим. Нами изучались эффективность различных концентраций этих препаратов против микроорганизмов. Экспериментально установлено, что использование 1 % раствора гипохлорита натрия в течении 5-7 мин была самой безвредной для обрабатываемых растений. Более высокие концентрации приводили к частичной или полной гибели растений. Лучший срок введения в культуру in vitro малины обыкновенной - появление минимум 10 почек на стебле, в период вегетации растений, при достижении роста малины 30-40 см. Наиболее эффективными оказались варианты со стерилизацией эксплантов 1 % раствором гипохлорита натрия в течение 5-7 минут с предварительной обработкой антимикробными препаратами: беномил 500 мг, цефотаксим 0,125 мг на 1 л в течение 3 часов, что обеспечивает увеличение числа жизнеспособных стерильных эксплантов до 20 %. То есть нами опытным путем установлено, что применение антимикробных препаратов (беномил, цефотаксим) при стерилизации эксплантов в сочетании с гипохлоритом натрия увеличивает приживаемость растений на 10 %
Ключевые слова
Использованные источники
[1] Kalashnikova, E.A., & Rodin, A.R. (2001). Obtaining planting material for woody, flowering, and herbaceous plants using methods of cell and genetic engineering. Moscow.
[2] Kolbanova, E.V., & Kukharchyk, N.V. (n.d.). Technology for creating healthy mother plantations of black currant in the Republic of Belarus. Samokhvalovichi, Belarus: RUE Institute for Fruit Growing.
[3] Altan, F., Bürün, B., & Ahin, N. (2010). Fungal contaminants observed during micropropagation of Lilium candidum L. and the effect of chemotherapeutic substances applied after sterilization. African Journal of Biotechnology, 9(7), 991-995.
[4] George, E.F. (1993). Plant propagation by tissue culture. Part 1: Technology. Edington: Exegetics Ltd.
[5] Gunson, H.E., & Spencer-Phillips, P.T.N. (1994). Latent bacterial infections: Epiphytes and endophytes as contaminants of micro propagated plants. In J.R. Nicholas (Ed.), Physiology, growth and development of plants in culture (pp. 379-396). Dordrecht: Kluwer Academic Publishers.
[6] Herman, E.B. (2004). Recent advances in plant tissue culture VIII: Microbial contaminants in plant tissue cultures: Solutions and opportunities 1996-2003. Shrub Oak, NY: Agritech Consultants Inc.
[7] Hirano, S.S., & Upper, C.D. (1990). Population biology and epidemiology of Pseudomonas syringae. Annual Review of Phytopathology, 28, 155-177.
[8] Leifert, C., & Waites, W.M. (1992). Bacterial growth in plant-tissue culture media. Journal of Applied Bacteriology, 72, 460-466.
[9] Mathias, R.J., & Boyd, L.A. (1986). Cefotaxime stimulates callus growth, embryogenesis and regeneration in hexaploid bread wheat (Triticum aestivum L. em. Thell). Plant Science, 46, 217-223.
[10] Medelyaeva, Z., Nozdracheva, G., Mikulina, Yu.S., & Golikova, S.A. (2022). Cultivation technology and efficiency of berry crops production in the conditions of the Central Chernozem Region. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 949, article number 012106.
[11] Asif, M., Eudes, F., Randhawa, H., Amundsen, E., Yanke, J., & Spaner, D. (2013). Cefotaxime prevents microbial contamination and improves microspore embryogenesis in wheat and triticale. Plant Cell Reports, 32(10), 1637-1646. doi: 10.1007/s00299-013-1476-4.
[12] Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15, 473-497.
[13] Pollock, K., Barfield, D.G., & Shields, R. (1983). The toxicity of antibiotics to plant cell cultures. Plant Cell Reports, 2, 36-39.
[14] Shen, H., Li, Z., Han, D., Yang, F., Huang, Q., & Ran, L. (2010). Detection of indigenous endophytic bacteria in Eucalyptus urophylla in vitro conditions. Frontiers of Agriculture in China, 4, 37-41.
[15] Shields, R., Robinson, S.J., & Anslow, P.A. (1984). Use of fungicides in plant tissue culture. Plant Cell Reports, 3, 33-36.
[16] Shehata, A.M., Wannarat, W., Skirvin, R.M., & Norton, M.A. (2010). The dual role of carbenicillin in shoot regeneration and somatic embryogenesis of horseradish (Armoracia rusticana) in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 102, 397-402.
[17] Thomas, P., Goplakrishnan, C., & Krishnareddy, M. (2011). Soft rot inciting Pectobacterium carotovorum (syn. Erwinia carotovora) is unlikely to be transmitted as a latent pathogen in micropropagated banana. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 105, 423-429.
[18] Vaz, F.B.D., Dossantos, A.V.P., Manders, G., Cocking, E.C., Davey, M.R., & Power, J.B. (1993). Plant regeneration from leaf mesophyll protoplasts of the tropical woody plant, passionfruit (Passiflora edulis fv Flavicarpa degener): The importance of the antibiotic cefotaxime in the culture medium. Plant Cell Reports, 12, 220-225.
[19] Waheeda, K., & Shyam, K.V. (2017). Formulation of novel surface sterilization method and culture media for the isolation of endophytic actinomycetes from medicinal plants and its antibacterial activity. Journal of Plant Pathology & Microbiology, 8(2).
[20] Yang, H.J. (1976). Effect of benomyl on Asparagus officinalis L. shoot and root development in culture media. HortScience, 11(5), 473-474.