ISSN 1694-6286
e-ISSN 1694-9250
Макала жөнөтүү
Кыргыз
Кыргыз улуттук агрардык университетинин жарчысы

Макаланы издөө

Кыргыз тоо мериносунун популяциялык түзүлүшү: ядролук локустардын өзгөрмөлүүлүгүн талдоо

Т Тыргоот Чортонбаев Ж Жайнагүл Исакова Э Эсенбек Белек уулу
Кабыл алынган убакыт 30.06.2025
Түзөтүлгөн 29.10.2025
Жарыяланган 12.12.2025

Аннотация

Бул изилдөөнүн актуалдуулугу глобалдык климаттын өзгөрүшүнө жана асыл тукум малдын азайышына карабастан, жергиликтүү, уникалдуу жана жогорку деңгээлде ыңгайлашкан мал тукумдарын сактоо зарылдыгынан келип чыгат. Кыргыз тоо мериносу тоо шарттарына жогорку деңгээлде ыңгайлашкан, жогорку сапаттагы жүн өндүргөн жана тартыш тоютту натыйжалуу колдонгон баалуу генетикалык ресурс болуп саналат. Бирок, генофонддун чектелүү болушу жана тукумсуздуктун көбөйүшү өндүрүмдүүлүктүн жана ыңгайлашуунун төмөндөшүнө алып келүүчү коркунучтарды жаратат. Бул изилдөөнүн максаты ядролук локустардын өзгөрмөлүүлүгүн баалоо менен кыргыз тоо меринос койлорунун популяциялык түзүмүн талдоо болгон. Бул максатка жетүү үчүн койлордун генотиптештирүүсү Эл аралык жаныбарлар генетикасы коому (ISAG) тарабынан сунушталган жогорку полиморфтук микросателлиттик маркерлердин (SSR) панелин колдонуу менен жүргүзүлдү. Аллельдик ар түрдүүлүк индекстери, байкалган жана күтүлгөн гетерозиготалуулук, F_IS фиксация коэффициенттери жана Nei генетикалык аралыктары эсептелген, ал эми популяциянын түзүмү кластердик анализ, PCA жана STRUCTURE моделин колдонуу менен талданган. Жыйынтыктар көпчүлүк локустарда аллельдик ар түрдүүлүктүн жогорку деңгээлин көрсөттү (локустагы аллелдер саны 6-14, аллелдеринин эффективдүү саны Ne 3,41-6,21, маалыматтык мазмундун индекси PIC > 0,69). Байкалган гетерозиготалуулук (Ho = 0,68-0,73) күтүлгөн гетерозиготалуулукка дээрлик окшош болгон (He = 0,70-0,74), ал эми F_IS коэффициенттери төмөн бойдон калган (0,012-0,028), бул олуттуу инбридингдин жоктугун көрсөтүп турат. Топтордун ортосундагы генетикалык дифференциация алсыз болгон (F_ST = 0,018-0,032), Nei боюнча генетикалык аралыктар минималдуу болгон (0,038-0,051) жана СТРУКТУРА анализи топтор боюнча бирдей бөлүштүрүлгөн эки шарттуу генетикалык кластерди аныктады, бул популяциянын бүтүндүгүн тастыктады. Бул изилдөөнүн практикалык баалуулугу кыргыз тоо мериносунун генофондунун азыркы абалын аныктоодо жатат, бул көзөмөлдөнгөн асылдандыруу боюнча сунуштарды иштеп чыгууга, уникалдуу аллелдерди сактоого жана тукумдун генетикалык ар түрдүүлүгүн сактоого мүмкүндүк берет, анын жагымсыз экологиялык шарттарга туруктуулугун камсыз кылат

Негизги сөздөр

генетикалык ар түрдүүлүк; микросателлиттик маркерлер; популяциянын түзүлүшү; гетерозиготалуулук; фиксация коэффициенти; аллельдик ар түрдүүлүк; кыргыз койлору
Цитаталоо
Chortonbaev, T., Isakova, Zh., & Belek uulu, E. (2025). Population structure of Kyrgyz Mountain Merino sheep: Analysis of nuclear locus variability. Bulletin of the Kyrgyz National Agrarian University, 23(4), 63-71. https://doi.org/10.63621/bknau./4.2025.63

Колдонулган булактар

  1. Abdelmanova, A.S., et al. (2021). Comparative study of the genetic diversity of local steppe cattle breeds from Russia, Kazakhstan and Kyrgyzstan by microsatellite analysis of museum and modern samples. Diversity, 13(8), article number 351. doi: 10.3390/d13080351.
  2. Bekturov, A.В., Isakova, Z., Kipen, V.N., Chortonbaev, T., Mukeeva, S.B., Osmonaliev, S.K., & Aitbaev, K.А. (2023). A genogeographic study of the Kyrgyz Mountain Merino via microsatellite markers. Vavilov Journal of Genetics and Breeding, 27(2), 162-168. doi: 10.18699/VJGB-23-22.
  3. Botstein, D., White, R.L., Skolnick, M., & Davis, R.W. (1980). Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphisms. American Journal of Human Genetics, 32(3), 314-331.
  4. Ceccobelli, S., et al. (2023). A comprehensive analysis of the genetic diversity and environmental adaptability in worldwide Merino and Merino-derived sheep breeds. Genetics Selection Evolution, 55(1), article number 24. doi: 10.1186/s12711-023-00797-z.
  5. Colli, L., et al. (2015). Whole mitochondrial genomes unveil the impact of domestication on goat matrilineal variability. BMC Genomics, 16, article number 1115. doi: 10.1186/s12864-015-2342-2.
  6. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 “On the Protection of Animals Used for Scientific Purposes”. (2010, September). Retrieved from https://eur-lex.europa.eu/legal-content/EN/TXT/?uri=CELEX:32010L0063.
  7. Duncanson, G.R. (2025). Veterinary treatment of sheep and goats (2nd ed.). Oxfordshire: Cabi.
  8. FAO. (2011). Molecular genetic characterization of animal genetic resources. FAO animal production and health guidelines. No. 9. Rome: FAO.
  9. Gáspárdy, A. (2021). Reality of mitogenome investigation in preservation of native domestic sheep breeds. In A. Elkelish (Ed.), Landraces-traditional variety and natural breed (Chapter 10). London: IntechOpen. doi: 10.5772/intechopen.95768.
  10. Gootwine, E. (2020). Genetics and breeding of sheep and goats. In F.W. Bazer, G.C. Lamb & G. Wu (Eds.), Animal agriculture (pp. 183-198). Amsterdam: Academic Press. doi: 10.1016/B978-0-12-817052-6.00010-0.
  11. Granero, A., Anaya, G., Demyda-Peyrás, S., Alcalde, M.J., Arrebola, F., & Molina, A. (2022). Genomic population structure of the main historical genetic lines of Spanish Merino sheep. Animals, 12(10), article number 1327. doi: 10.3390/ani12101327.
  12. Grasso, A.N., Goldberg, V., Navajas, E.A., Iriarte, W., Gimeno, D., Aguilar, I., Medrano, J.F., Rincón, G., & Ciappesoni, G. (2014). Genomic variation and population structure detected by single nucleotide polymorphism arrays in Corriedale, Merino and Creole sheep. Genetics and Molecular Biology, 37(2), 389-395. doi: 10.1590/s1415-47572014000300011.
  13. Gurgul, A., Jasielczuk, I., Miksza-Cybulska, A., Kawęcka, A., Szmatoła, T., & Krupiński, J. (2021). Evaluation of genetic differentiation and genome-wide selection signatures in Polish local sheep breeds. Livestock Science, 251, article number 104635. doi: 10.1016/j.livsci.2021.104635.
  14. Iskakov, K.A., Kulatayev, B.T., Zhumagaliyeva, G.M., & Casanova, P.M.P. (2017). Productive and biological features of Kazakh fine-wool sheep in the conditions of the Almaty region. OnLine Journal of Biological Sciences, 17(3), 219-225. doi: 10.3844/ojbsci.2017.219.225.
  15. Kawęcka, A., Pasternak, M., Miksza-Cybulska, A., & Puchała, M. (2022). Native sheep breeds in Poland – importance and outcomes of genetic resources protection programmes. Animals, 12(12), article number 1510. doi: 10.3390/ani12121510.
  16. Kulibaba, R., Sakhatskyi, M., & Liashenko, Y. (2023). Analysis of genotyping features of bovine cattle individuals at the CSN2 locus using ACRS-PCR methods. Animal Science and Food Technology, 14(2), 44-56. doi: 10.31548/animal.2.2023.44.
  17. Li, X., et al. (2024). Whole-genome resequencing to investigate the genetic diversity and mechanisms of plateau adaptation in Tibetan sheep. Journal of Animal Science and Biotechnology, 15, article number 164. doi: 10.1186/s40104-024-01125-1.
  18. McKenzie, G.W., Abbott, J., Zhou, H., Fang, Q., Merrick, N., Forrest, R.H., Sedcole, J.R., & Hickford, J.G. (2010). Genetic diversity of selected genes that are potentially economically important in feral sheep of New Zealand. Genetics Selection Evolution, 42, article number 43. doi: 10.1186/1297-9686-42-43.
  19. Megdiche, S., Mastrangelo, S., Ben Hamouda, M., Lenstra, J.A., & Ciani, E. (2019). A combined multi-cohort approach reveals novel and known genome-wide selection signatures for wool traits in Merino and Merino-derived sheep breeds. Frontiers in Genetics, 10, article number 1025. doi: 10.3389/fgene.2019.01025.
  20. Moioli, B., Pilla, F., & Tripaldi, C. (1998). Detection of milk protein genetic polymorphisms in order to improve dairy traits in sheep and goats: A review. Small Ruminant Research, 27(3), 185-195. doi: 10.1016/S0921-4488(97)00053-9.
  21. Nei, M. (1972). Genetic distance between populations. American Naturalist, 106, 283-292. doi: 10.1086/282771.
  22. Nei, M. (1978). Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. Genetics, 89(3), 583-590. doi: 10.1093/genetics/89.3.583.
  23. Odjakova, T., Todorov, P., Kalaydzhiev, G., Salkova, D., Dundarova, H., Radoslavov, G., & Hristov, P. (2023). A study on the genetic diversity and subpopulation structure of three Bulgarian mountainous sheep breeds, based on genotyping of microsatellite markers. Small Ruminant Research, 226, article number 107034. doi: 10.1016/j.smallrumres.2023.107034.
  24. Peakall, R., & Smouse, P.E. (2012). GenAlEx 6.5: Genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research – an update. Bioinformatics, 28(19), 2537-2539. doi: 10.1093/bioinformatics/bts460.
  25. Punuru, P.R., Regula, V., Metta, M., Krovvidi, S., Bhumireddy, J.M., Baratam, P., Sunkara, V., & Poonooru, R.R. (2025). Genetic characterization of semi-arid sheep populations in India using microsatellite markers. Frontiers in Animal Science, 6, article number 1553610. doi: 10.3389/fanim.2025.1553610.
  26. Romanov, M.N. (2021). British sheep breed diversity. Kent: Kent Academic Repository.
  27. Sambrook, J., & Russell, D.W. (2001). Molecular cloning: A laboratory manual (3rd ed.). New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press.
  28. Schillhorn van Veen, T.W. (1995). The Kyrgyz sheep herders at a crossroads. London: Overseas Development Institute.
  29. Weir, B.S., & Cockerham, C.C. (1984). Estimating F-statistics for the analysis of population structure. Evolution, 38(6), 1358-1370. doi: 10.2307/2408641.
  30. Zholborsov, U., Chortonbaev, T., Azhibekov, A., & Bekturov, A. (2024). Biological and productive features of Kyrgyz Mountain Merino breed types in different climatic zones. BIO Web of Conferences, 83, article number 01005. doi: 10.1051/bioconf/20248301005.