ISSN 1694-6286
e-ISSN 1694-9250
Макала жөнөтүү
Кыргыз
Кыргыз улуттук агрардык университетинин жарчысы

Макаланы издөө

СОҢ-КӨЛДҮН СУУ БИОТОБУНДАГЫ БАКТЕРИЯЛАРДЫН РОЛУ ЖАНА АР ТҮРДҮҮЛҮГҮ

Т Тинатин Дөөлөткелдиева Б Бааркул Бектурганова С Сайкал Бобушова
Кабыл алынган убакыт 30.09.2024
Түзөтүлгөн 03.12.2024
Жарыяланган 29.12.2024

Аннотация

Бул макалада Соң-Көл өрөөнүнүн гидротүзүлүшүндө кездешкен микроорганизмдердин түрлөрү жана алардын сандык катышы экосистемадагы мааниси изилденди. Бул үчүн көлдүн ар кайсы четинен суу үлгүлөрү чогултулуп, лабораториялык шартта анализденди. Изилдөөдө Соң-Көл көлүнүн суу чөйрөсүндөгү бактериялардын био ар түрдүүлүгү жана алардын экосистемадагы негизги биологиялык функциялары туралуу кеңири маалымат берилди. Суунун үлгүлөрү июль айында СоңКөл көлүнүн жээгинен горизонталдык багытта 5 жана 15 м аралыкта, ошондой эле вертикалдык тереңдиктен үлгүлөр үстүнкү (20-50 см), ортоңку (1-2 м) жана түпкү (5-8 м) катмарларынан алынган. Бул үлгүлөр Proteobacteria, Bacteroidetes, Actinobacteria, Cyanobacteria жана Firmicutes бөлүмдөрүнө кирген микроорганизмдердин өкүлдөрүн камтыды. Суунун үстүнкү катмарында цианобактериялар басымдуулук кылса, ортоңку катмарларда Actinobacteria, ал эми түпкү катмарларда Proteobacteria басымдуулук кылганы аныкталды. Изилдөөнүн жыйынтыгында E. coli бактериясы суунун ар кайсы тереңдик катмарларынан табылган эмес, бирок Enterobacter, Pseudomonas жана Mycobacterium урууларына кирген бактериялар кездешкен. Сандык көрсөткүчтөр боюнча Enterococcus бактериясы басымдуулук кылганы байкалган жана фекалдык булгануунун деңгээли аз же такыр жок деп эсептелди

Негизги сөздөр

Соң-Көл бактериялар фекалдык булгануу суу микрофлорасы адаптация Proteobacteria Firmicutes
Цитаталоо
Doolotkeldieva, T., Bekturganova, B., & Bobushova, S. (2024). ROLE AND DIVERSITY OF BACTERIA IN THE WATER BIOTA OF LAKE SON-KUL. Bulletin of the Kyrgyz National Agrarian University, 22(6), 112-118.

Колдонулган булактар

  1. Sattler, B., Puxbaum, H., & Psenner, R. (2001). Bacterial growth in super cooled cloud droplets. Geophysical Research Letters, 28, 239-242.
  2. Segawa, T., Miyamoto, K., Ushida, K., Agata, K., Okada, N., & Kohshima, S. (2005). Seasonal change in bacterial flora and biomass in mountain snow from Tateyama Mountains, Japan, analyzed by 16SrRNA gene sequencing and real-time PCR. Applied and Environmental Microbiology, 71, 123-130.
  3. Selbmann, L., Onofri, S., Fenice, M., Federici, F., & Petruccioli, M. (2002). Production and structural characterization of the exopolysaccharide of the Antarctic fungus Phoma herbarum CCFEE 5080. Research in Microbiology, 153, 585-592.
  4. Schroers, H.-J., Samuels, G.J., Seifert, K.A., & Gams, W. (1999). Classification of the mycoparasite Gliocladium roseum in Clonostachys as C. rosea, its relationship to Bionectria ochroleuca, and notes on other Gliocladium-like fungi. Mycologia, 91(2), 365-385.
  5. Suttle, C.A. (2005). Viruses in the sea. Nature, 437, 356-361.
  6. Suttle, C.A. (2007). Marine viruses – major players in the global ecosystem. Nature Reviews Microbiology, 5, 801-812.
  7. Staley, C., Gould, T.J., Wang, P., Phillips, J., Cotner, J.B., & Sadowsky, M.J. (2014). Bacterial community structure is indicative of chemical inputs in the Upper Mississippi River. Frontiers in Microbiology, 5.
  8. Staley, C., & Sadowsky, M.J. (2016). Regional similarities and consistent patterns of local variation in beach sand bacterial communities throughout the Northern Hemisphere. Applied and Environmental Microbiology, 82, 2751-2762.
  9. Spietz, R.L., Williams, C.M., Rocap, G., & Horner-Devine, M.C. (2015). A dissolved oxygen threshold for shifts in bacterial community structure in a seasonally hypoxic estuary. PLoS One, 10.
  10. Szekely, A.J., Berga, M., & Langenheder, S. (2013). Mechanisms determining the fate of dispersed bacterial communities in new environments. ISME Journal, 7, 61-71.
  11. Schlatter, D., Fubuh, A., Xiao, K., Hernandez, D., Hobbie, S., & Kinkel, L. (2009). Resource amendments influence density and competitive phenotypes of Streptomyces in soil. Microbial Ecology, 57, 413-420. doi: 10.1007/s00248-008-9433-4.
  12. Shepherdson, E.M., Baglio, C.R., & Elliot, M.A. (2023). Streptomyces behavior and competition in the natural environment. Current Opinion in Microbiology, 71, article number 102257. doi: 10.1016/j.mib.2022.102257.
  13. Sousa, J.A.J., & Olivares, F.L. (2016). Plant growth promotion by streptomycetes: ecophysiology, mechanisms and applications. Chemical and Biological Technologies in Agriculture, 3(1), article number 24.
  14. Shrivastava, P., & Kumar, R. (2018). Actinobacteria: Eco-friendly candidates for control of plant diseases in a sustainable manner. In New and future developments in microbial biotechnology and bioengineering (pp. 79-91). Elsevier.
  15. Taylor, K.C., Mayewski, P.A., & Alley, R.B. (1997). The Holocene-Younger Dryas transition recorded at Summit, Greenland. Science, 278, 825-827.
  16. Talbot, P.H. (1971). Principles of fungal taxonomy. Macmillan International Higher Education.
  17. Tamura, K., Stecher, G., Peterson, D., Filipski, A., & Kumar, S. (2013). MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 6.0. Molecular Biology and Evolution, 30(12), 2725-2729.
  18. Tamames, J., Abellan, J.J., Pignatelli, M., Camacho, A., & Moya, A. (2010). Environmental distribution of prokaryotic taxa. BMC Microbiology, 10, article number 85.
  19. Tyc, O., Song, C., Dickschat, J.S., Vos, M., & Garbeva, P. (2017). The ecological role of volatile and soluble secondary metabolites produced by soil bacteria. Trends in Microbiology, 25(4), 280-292.
  20. Uspon, R., Newsham, K.K., Bridge, P.D., Pearce, D.A., & Read, D.J. (2009). Taxonomic affinities of dark septate root endophytes of Colobanthus quitensis and Deschampsia antarctica, the two native Antarctic vascular plant species. Fungal Ecology, 2, 184-196.
  21. Wakelin, S.A., Macdonald, L.M., & Rogers, S.L. (2008). Habitat selective factors influencing the structural composition and functional capacity of microbial communities in agricultural soils. Soil Biology and Biochemistry, 40(3), 803-813.
  22. Wang, G., Bei, S., Li, J., Bao, X., & Ebinger, J. (2010). Adapting to climate change in Eastern Europe and Central Asia. Washington: World Bank Publications.
  23. Wieland, G., Neumann, R., & Backhaus, H. (2001). Variation of microbial communities in soil, rhizosphere, and rhizoplane in response to crop species, soil type, and crop development. Applied and Environmental Microbiology, 67, 5849-5854.
  24. Wagg, C., Dudenho, J.H., Widmer, F., & Heijden, M.G.A. (2018). Linking diversity, synchrony and stability in soil microbial communities. Functional Ecology, 32, 1280-1292. doi: 10.1111/1365-2435.13056.
  25. Wagg, C., Hautier, Y., Pellkofer, S., Banerjee, S., & Schmid, B. (2021). Diversity and asynchrony in soil microbial communities stabilizes ecosystem functioning. eLife, 10, article number e62813. doi: 10.7554/eLife.62813.
  26. Wynn-Williams, D. (1996). Antarctic microbial diversity: The basis of polar ecosystem processes. Biodiversity and Conservation, 5, 1271-1293.
  27. Weinstein, R.N., Montiel, P.O., & Johnstone, K. (2000). Influence of growth temperature on lipid and soluble carbohydrate synthesis by fungi isolated from fellfield soil in the maritime Antarctic. Mycologia, 92, 222-229.
  28. White, T.J. (1990). Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In PCR protocols, a guide to methods and applications (pp. 315-322).
  29. Wang, Y., Yang, D., & Yu, Z. (2023). New lactones produced by Streptomyces sp. SN5431 and their antifungal activity against Bipolaris maydis. Microorganisms, 11, article number 616. doi: 10.3390/microorganisms11030616.
  30. Xu, Z.F., Hansen, M.A., Hansen, L.H., Jacquiod, S., & Sorensen, S.J. (2014). Bioinformatic approaches reveal metagenomic characterization of soil microbial community. PLoS One, 9, article number e93445.
  31. Yasir, M., Azhar, E.I., Khan, I., Bibi, F., & Baabdullah, R. (2015). Composition of soil microbiome along elevation gradients in southwestern highlands of Saudi Arabia. BMC Microbiology, 15(1), 1-9.
  32. Yadav, A.N., Verma, P., & Kumar, V. (2018). Biodiversity of the genus Penicillium in different habitats. In New and future developments in microbial biotechnology and bioengineering: Penicillium system properties and applications (pp. 1-18). Elsevier.