Аннотация

В работе приведены результаты апробационных испытаний вакцины против чумы мелких жвачных животных (ЧМЖЖ) из штамма «Nigeria75/1». Исследовательская работа проводилась в условиях Национального референтного центра по ветеринарии, Комитета ветеринарного контроля и надзора, Министерства сельского хозяйства Республики Казахстан (НРЦВ КВКиН МСХ РК) и Научно-исследовательского института проблем биологической безопасности Министерства здравоохранения Республики Казахстана перед её регистрацией в реестре ветеринарных препаратов Республики Казахстана. По результатам апробационных испытаний установлено, что вакцина стерильна, растворяется в течение 60 сек., рН составляет 7,2, массовая доля влаги 2,95±0,5%, титр биологической активности вакцины составляет более 6,50±0,08 lgТЦД50/см3. Вакцина безвредна и не имеет поствакцинальных осложнений. Имеет напряженный иммунитет в течение 3 лет. Физико-биологические свойства вакцины соответствуют стандарту организации и пригодны для специфической профилактики против ЧМЖЖ в неблагополучных пунктах

Ключевые слова

чума мелких жвачных животных вирус вакцина регистрационные испытание вакцинация безвредность иммуногенность
ЦИТИРОВАНИЕ
Abdurahman, U., Khoshemetov, Zh., Nurgaziev, R., Krutskaya, E., Kondibaeva, Zh., Amanova, Zh., Sametova, Zh., Abitaev, R., Turyskeldi, Sh., & Bulatov, Ye. (2024). REGISTRATION TRIALS OF A VACCINE AGAINST PETE OF PETTES RUMINANTS. Bulletin of the Kyrgyz National Agrarian University, 22(3), 37-46.

Использованные источники

[1] Abduraimov, E.O., Ershibulov, Z.D., Zhugunisov, K.D., Bulatov, E.A., Taranov, D.S., Nurgaziev, R.Z., & Krutskaya, E.D. (2016). Study of the immunobiological properties of a vaccine against peste des petits ruminants. Bulletin of Altai State Agrarian University, 2(136), 121-124.

[2] Abduraimov, E.O., Mamadaliev, S.M., Mambetaliev, M.A., & Bulatov, E.A. (2001). Study of the immunobiological properties of the "G20-LKV" strain of goatpox virus. In Quarantine and zoonotic infections in Kazakhstan: Collection of works dedicated to the 10th anniversary of Kazakhstan’s sovereignty and the 50th anniversary of the Taldykorgan anti-plague station (Vol. 4, pp. 296-297). Almaty.

[3] Andzhaparidze, O.G. (1975). Mixoviruses: Scientific review (Current state, problems). Moscow: Meditsina.

[4] Banyard, C., Parida, S., Batten, C., Oura, C., Kwiatek, O., & Libeau, G. (2010). Global distribution of peste des petits ruminants virus and prospects for improved diagnosis and control. Journal of General Virology, 91(12), 2885-2897. doi: 10.1099/vir.0.025841-0.

[5] Bukrinskaya, A.G., & Zaides, V.M. (1973). Molecular biology of paramyxoviruses. Moscow: Meditsina.

[6] Furley, C.W., Taylor, W.P., & Obi, T.U. (1987). An outbreak of peste des petits ruminants in a zoological collection. Veterinary Record, 121(19), 443-447. doi: 10.1136/vr.121.19.443.

[7] Global strategy for the control and eradication of PPR. (2015). Retrieved from https://www.woah.org/app/uploads/2021/12/ppr-global-strategy-avecannexes-2015-03-28.pdf.

[8] GOST 24061-2012. (2012). Medicinal biological agents for veterinary use. Method for determining moisture content. Moscow: Rosstandart.

[9] GOST 28083-2012. (2012). Method for controlling vacuum in ampoules and vials. Moscow: Rosstandart.

[10] GOST 28085-2013. (2013). Methods for controlling sterility. Moscow: Rosstandart.

[11] GOST R53877-2010. (2010). Method for determining hydrogen index and free acidity. Moscow: Rosstandart.

[12] Kock, R.A., Orynbayev, M.B., Sultankulova, K.T., Strochkov, V.M., Omarova, Z.D., Shalgynbayev, E.K., Rametov, N.M., Sansyzbay, A.R., & Parida, S. (2015). Detection and genetic characterization of lineage IV peste des petits ruminant virus in Kazakhstan. Transboundary and Emerging Diseases, 62(5), 470-479. doi: 10.1111/tbed.12398.

[13] Kumar, N., Barua, S., Riyesh, T., & Tripathi, B.N. (2017). Advances in peste des petits ruminants vaccines. Veterinary Microbiology, 206, 91-101. doi: 10.1016/j.vetmic.2017.01.010.

[14] Mahapatra, M., Selvaraj, M., & Parida, S. (2020). Comparison of immunogenicity and protective efficacy of PPR live attenuated vaccines (Nigeria 75/1 and Sungri 96) administered by intranasal and subcutaneous routes. Vaccines, 8(2), article number 168. doi: 10.3390/vaccines8020168.

[15] Mariner, C., Gachanja, J., Tindih, H., & Toye, Ph. (2017). A thermostable presentation of the live, attenuated peste des petits ruminant’s vaccine in use in Africa and Asia. Vaccine, 35(30), 3773-3779. doi: 10.1016/j.vaccine.2017.05.040.

[16] Parida, S., Muniraju, M., Mahapatra, M., Muthuchelvan, D., Buczkowski, H., & Banyard, A.C. (2015). Peste des petits ruminants. Veterinary Microbiology, 181(1-2), 90-106. doi: 10.1016/j.vetmic.2015.08.009.

[17] Rojas, J.M., Sevilla, N., & Martín, V.A. (2021). New look at vaccine strategies against PPRV focused on adenoviral candidates. Frontiers in Veterinary Science, 8, 729-879. doi: 10.3389/fvets.2021.729879.

[18] Sanitary regulations for the design, equipment, and maintenance of experimental-biological clinics (vivariums) No. 8.01.004.97. (1997). Retrieved from http://www.omegametall.ru/Index2/1/4293772/4293772469.htm.

[19] WOAH Terrestrial Manual. (2018). Tests for sterility and freedom from contamination of biological materials intended for veterinary use. In Terrestrial Manual 2018 (Chapter 1.1.9, pp. 109-122). Paris, France: OIE.